Consulta por: Publicación seriada
Autor: Márquez, Y. (Comienzo)
2 registros cumplieron la condición especificada en la base de información GCv. ()
Registro 1 de 2, Base de información GCv
Portada
Artículos de éste númeroArtículos de éste número
Autor: Flores Solano, Celeste Andreina ; Meléndez, C. ; Carmona, G. ; Márquez, Y. ; Mendoza, C. ; Vilanova Fernández, Lourdes Tibisay ; Meléndez, C. ; Carmona, G. ; Márquez, Y. ; Mendoza, C. ; Vilanova Fernández, Lourdes Tibisay
Título: ACTIVIDAD DE LA SUPERÓXIDO DISMUTASA CU/ZN EN PLASMA SEMINAL E INTEGRIDAD DE LA MEMBRANA PLASMÁTICA EN SEMEN DE CERDO (SUS SCROFA DOMESTICA) CONSERVADO CON MELATONINA
ACTIVITY OF THE SUPERNEXID DISMUTASE CU /ZN IN SEMINAL PLASMA AND INTEGRITY OF PLASMATIC MEMBRANE IN SEMEN OF BOAR (SUS SCROFA DOMESTICA) CONSERVED WITH MELATONIN
ISSN: 1690-8414
Fecha: 2017
Páginas/Colación: pp. 37-42
En:/ Gaceta de Ciencias Veterinarias Vol 22 Nro 2 Diciembre 2017
Información de existenciaInformación de existencia
Categoría Temática: Palabras: VET01 VET01
Palabras Claves del Autor: Palabras: INTEGRIDAD DE MEMBRANA INTEGRIDAD DE MEMBRANA, Palabras: MELATONINA MELATONINA, Palabras: SEMEN SEMEN, Palabras: SOD SOD
Documentos asociados
Oprima aquí para visualizar el documento PDF:Documento en Formato PDF Documento en Formato PDF

RESUMEN
Esta investigación tiene como objetivo determinar el efecto de la melatonina sobre el superóxido dismutasa (SOD) en el plasma seminal e integridad de membrana espermática durante la conservación a 16°C. Metodología: Se tomaron muestras seminales de verracos entre 7-18 meses de edad mediante técnica manual de extracción de mano enguantada en Inversiones Porcinas C.A. Las muestras óptimas fueron diluidas y divididas en alícuotas: control (con diluyente), control con vehículo (diluyente y etanol), semen con melatonina (1,25 mM) almacenándose las alícuotas a 16ºC para posterior valoración al día 0 y 1 de la preparación. Se evaluó la actividad enzimática de la SOD (kit comercial Cayman®) e integridad de membrana (test hipo-osmótico). Los resultados se analizaron mediante ANOVA, con paquete estadístico SPSS 15.0 para Windows con p<0,05. Resultados: las muestras con melatonina el día 0 presentaron actividad enzimática mayor sin diferencias significativas, sostenida hasta el día 01 con la significancia (p<0,05) en comparación al grupo control; con respecto a la integridad de membrana (HOST+) las muestras con melatonina presentaron una elevación significativa (p<0,05) del porcentaje de espermatozoides HOST+ en diferencia a otros grupos al día 0 de conservación, manteniéndose el día 01 de conservación. Conclusión: La melatonina mejora la actividad de la SOD en plasma seminal e integridad de membrana durante la conservación de semen cerdo a 16°C.
Palabras clave: SOD, semen, integridad de membrana, melatonina.

ABSTRACT
The objective of this research is to determine the effect of melatonin on superoxide dismutase (SOD) in seminal plasma and sperm membrane integrity during storage at 16°C. Methodology: Boar seminal samples were taken between 7-18 months of age using manual technique of gloved hand extraction in Inversiones Porcinas C.A. The optimal samples were diluted and aliquoted: control (with diluent), vehicle control (diluent and ethanol), semen with melatonin (1.25 mM), aliquots being stored at 16ºC for subsequent evaluation at day 0 and 1 of the preparation. The enzymatic activity of SOD (commercial kit Cayman®) and membrane integrity (hypo-osmotic test) was evaluated. The results were analyzed by means of ANOVA, with statistical package SPSS 15.0 for Windows with p<0.05. Results: the samples with melatonin on day 0 presented greater enzymatic activity without significant differences, sustained until day 01 with significance (p<0.05) in comparison to the control group; with respect to membrane integrity (HOST +) the samples with melatonin presented a significant elevation (p<0.05) of the percentage of HOST + sperm in difference to other groups at day 0 of preservation, keeping on day 01 of conservation. Conclusion: Melatonin improves the activity of SOD in seminal plasma and membrane integrity during the conservation of pig semen at 16 °C.
Key words: SOD, semen, membrane integrity, melatonin.

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
[1] Sánchez R. Congelación de semen en porcino. Historia y evolución. 2007. Disponible en URL: http://www.3tres3.com/los-expertos-opinan/congelacion-de-semen-en-porcino-historia-y-evolucion-1767.
[2] Córdova-Izquierdo A, Ruiz-Lang CG, Córdova-Jiménez CA, Córdova-Jiménez MS, Guerra-Liera JE, Rodríguez-Denis BE, Salinas KA. Estrés oxidativo y antioxidantes en la conservación espermática. RCCV 2009; 3: 01-38.
[3] Kowalowka M, Wysocki P, Fraser L, Strzezek J. Extracellular superoxide dismutase of boar seminal plasma. Reprod Domest Anim. 2008; 43(4):490-496.
[4] Aitken RJ, Krausz C. Oxidative stress, DNA damage and the Y chromosome. Reprod 2001; 122: 497-506.
[5] Chihuailaf RH, Contreras PA, Wittwer FG. Patogénesis del estrés oxidativo: Consecuencias y evaluación en salud animal. Vet Méx 2002; 33, 265-283.
[6] Hernández A, Hernández A, Barrientos M, Cervantes P, Domínguez B, Absalón-Medina VA. Actividad de las enzimas superóxido dismutasa (SOD) y glutatión peroxidasa (GSH-PX) del plasma seminal de cerdo en Veracruz, México. AICA 2015; 6:98-111.
[7] Tavilani H, Goodarzi MT, Vaisi-raygani A, Salimi S, Hassanzadeh T. Activity of antioxidant enzymes in seminal plasma and their relationship with lipid peroxidation of spermatozoa. Int Braz J Urol. 2008; 34(4):485-91.
[8] Lifeng Y, Jining L, Shengmin W, Shenghu Z, Guixiang J, Aihua G. The role of oxidative stress and antioxidants in male fertility. Cent European J Urol. 2013; 66 (1): 60-67.
[9] Reiter R, Tan D, Manchester L, Qi W. Biochemical reactivity of melatonin with reactive oxygen and nitrogen species. Cell Biochem Biophys 2001; 34:237-256. [10] Ressmeyer A, Mayo J, Zelosko V, Sainz R, Tan D, Poeggeler B, Antolin I, Zsizsik B, Reiter R, Hardeland R. Antioxidant properties of the melatonin metabolite N1-acetyl-5-methoxykynuramine (AMK): scavenging of free radicals and prevention of protein destruction. Redox Rep 2003; 8: 205-213.
[11] Tan D, Manchester L, Reiter R, Plummer B, Hardies L, Weintraub S, Vijayalaxmi T, Shepherd A. A novel melatonin metabolite, cyclic 3-hydroxymelatonin: a biomarker of in vivo hydroxyl radical generation. Biochem Biophys Res Commun 1998; 253:614-620.
[12] Bradford M. A rapid and sensitive method for the quantities of microgram of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem 1976; 72: 248-254.
[13] Johnson L, Weize K, Fiser P, Maxwell W. Storage of boar semen. Anim. Reprod. Sci 2000; 62:143-172.
[14] Membrillo-Ortega A, Córdova A, Hicks J, Ivonne M, Martínez V, Valencia J. Peroxidación lipídica y antioxidantes en la preservación de semen. INCI 2003; 28: 699-704.
[15] Walczak-Jedrzejowska R, Wolski JK, Lowikowska-HilczerJolanta S. Seminal superoxide dismutase activity and its relationship with semen quality and SOD gene polymorphism, J Assist Reprod Genet. 2014; 31(5): 549-554.
[16] Bansal AK, Bilaspuri GS. Impacts of oxidative stress and antioxidants on semen functions. Vet Med Int 2011; Disponible en: URL: https://www.hindawi.com/journals/vmi/2011/686137/
[17] El-Raey M, Badr MR, Rawash ZM, Darwish MG. Evidences for the role of melatonin as a protective additive during buffalo semen freezing. Amer J Anim Vet Sci 2014; 9: 252-262.
[18] Jang H, Kim Y, Kim B, Park I, Cheong H, Kim J, Park C, Kong H, Lee H, Yang B. Ameliorative effects of melatonin against hydrogen peroxide-induced oxidative stress on boar sperm characteristics and subsequent in vitro embryo development. Reprod Domest Anim 2010; 45: 943-950.
[19] Perumal P, Chamuah J, Nahak A, Rajkhowa C. Effect of seasons on semen production, effect of melatonin on the liquid storage (5 °C) with correlated study of birth rate in mithun (Bos frontalis). As Pac J Reprod 2015; 4:1-12.
[20] Perumal P, Kezhavituo V, Khate K. (2013). Effect of addition of melatonin on the liquid storage (5°C) of mithun (Bos frontalis) semen. Inter J Zoo. Disponible en: URL: http: file:///D:/Downloads/642632.pdf. [Consulta 16 Enero, 2017].
[21] Succu S, Berlinguer F, Pasciu V, Satta V, Leoni G, Naitana S. Melatonin protects ram spermatozoa from cryopreservation injuries in a dose-dependent manner. J Pineal Res 2011; 50:310-318.
[22] Zhang XG, Li H, Wang L, Hao YY, Liang GD, Ma YH, Yang GS, Hu JH. The effects of different levels of superoxide dismutase in Modena on boar semen quality during liquid preservation at 17°C. Anim Sci J 2017; 88(1):55-62.
[23] Quintero A, Rubio-Guillén J, Rigau T, Rodríguez JE. El test de resistencia hiperosmótica: un test de gran utilidad para medir la función espermática en semen de verraco. Rev Cient BIOTAM. 2005; II: 409-410.
[24] Tortolero I, Arata-Bellabarba G, Alfonso J, Gómez R, Regadera J. Estrés oxidativo y función espermática. Rev Venez Endocrinol Metab. (2005); 3 (3): 12-19.
[25] Villa N, Castaño D, Duque P, Ceballos A. Actividad de la glutatión peroxidasa y la superóxido dismutasa en sangre y plasma seminal en caballos colombianos. Rev Colomb Cs Pec. 2012; 25(1): 64-70.
[26] Sánchez R, Arboleda G. Mitocondria y muerte celular. Invest Nova 2008; 6 (10):190-200.
[27] Mohamed E, Badr MR, Rawash ZM, Darwish GM. Evidences for the role of melatonin as a protective additive during buffalo semen freezing. Amer J Anim Vet Sci. 2014; 9(4):252-262.

Registro 2 de 2, Base de información GCv
Portada
Artículos de éste númeroArtículos de éste número
Autor: Cortez, R. ; Meléndez, C. ; Perazzo, Y. ; Márquez, Y. ; Flores Solano, Celeste Andreína ; López de Ortega, Aura América ; Meléndez, C. ; Perazzo, Y. ; Márquez, Y. ; Flores Solano, Celeste Andreína ; López de Ortega, Aura América
Título: CAPACIDAD ANTIOXIDANTE DE BACTERIAS CON POTENCIAL PROBIÓTICO DEL GENERO LACTOBACILLUS SPP AISLADAS A PARTIR DE HECES Y CONTENIDO DUODENAL DE PERROS Y GATOS
ANTIOXIDANT CAPACITY OF LACTOBACILLUS SPP BACTERIA WITH PROBIOTIC POTENTIAL ISOLATED FROM FECES AND DUODENAL CONTENT OF DOGS AND CATS
ISSN: 1690-8414
Fecha: 2017
Páginas/Colación: pp. 48-52
En:/ Gaceta de Ciencias Veterinarias Vol 22 Nro 2 Diciembre 2017
Información de existenciaInformación de existencia
Categoría Temática: Palabras: VET01 VET01
Palabras Claves del Autor: Palabras: ANTIOXIDANTES ANTIOXIDANTES, Palabras: CONTENIDO DUODENAL CONTENIDO DUODENAL, Palabras: HECES HECES, Palabras: LACTOBACILLUS SSP LACTOBACILLUS SSP
Documentos asociados
Oprima aquí para visualizar el documento PDF:Documento en Formato PDF Documento en Formato PDF

RESUMEN
El objetivo de esta investigación fue determinar si las bacterias ácido láctico (BAL) aisladas de heces y de contenido duodenal de gatos y perros adultos, difieren en cuanto a la capacidad antioxidante. La toma de muestras de heces se realizó directamente del ano, con hisopo estéril y el contenido duodenal (CD) por aspirado a nivel de duodeno mediante laparotomía bajo anestesia general del paciente. Las muestras fueron colocadas en tubo de vidrio que contenía 4,5 ml de caldo Man Rogosa Sharpe (MRS) (Himedia®) para luego ser cultivadas por agotamiento en placas con agar MRS (Himedia®) y aisladas e identificadas mediante el kit de identificación API50CH. Una vez identificadas las cepas, se determinó dienos conjugados (DC) mediante extracción con isopropanol, malondialdehído (MDA) por el test para sustancias reaccionantes con el ácido 2-tiobarbitúrico (TBARS), superóxido dismutasa (SOD) y glutatión (GSH) mediante kit comercial. Las bacterias aisladas tanto en heces como en CD fueron L. leuconostoc, L. plantarum y L. paracasei y los resultados obtenidos en las bacterias aisladas de heces fueron los siguientes: DC 0,00174± 0,00005 mol/mg PT, MDA 0,36± 0,037 nmol/mg PT; GSH 7,7± 0,6 U/g PT; SOD 22,0± 1,5 U/g PT mientras que para las bacterias aisladas de CD fue de DC 0,00172± 0,00003; MDA 0,40± 27; GSH 8,9± 0,4; SOD 22,1± 2,3; sin presentar diferencias significativas entre la ubicación de la extracción de la muestra en ninguno de los parámetros. Conclusión: las bacterias aisladas presentaron alta actividad antioxidante la cual no es afectada por la ubicación anatómica.
Palabras clave: Lactobacillus spp, antioxidantes, heces, contenido duodenal.

ABSTRACT
The objective of this investigation was to determine whether lactic acid bacteria (BAL) isolated from faeces and duodenal content of cats and adult dogs, differ in terms of antioxidant capacity. The stool samples were taken directly from the anus, with sterile swab and duodenal contents (CD) by aspirate at the duodenum level by laparotomy under general anesthesia of the patient, the samples were placed in a glass tube containing 4.5 ml of Man Rogosa Sharpe broth (MRS) (Himedia®) to then be cultivated by depletion in plates with MRS agar (Himedia®) and isolated and identified by the API50CH identification kit. Once the strains were identified, conjugated dienes (DC) were determined by extraction with isopropanol, malondialdehyde (MDA) by the test for reactants with 2-thiobarbituric acid (TBARS), superoxide dismutase (SOD) and glutathione (GSH) by means of a kit. commercial. The bacteria isolated in both feces and CD were L. leuconostoc, L. plantarum and L. paracasei and the results obtained in the bacteria isolated from faeces were as follows: DC 0.00174 ± 0.00005 mol / mg PT, MDA 0 , 36 ± 0.037 nmol / mg PT; GSH 7.7 ± 0.6 U / g PT; SOD 22.0 ± 1.5 U / g PT while for bacteria isolated from CD was 0.00172 ± 0.00003 DC; MDA 0.40 ± 27; GSH 8.9 ± 0.4; SOD 22.1 ± 2.3; without presenting significant differences between the location of the extraction of the sample in any of the parameters. Conclusion: the isolated bacteria showed high antioxidant activity which is not affected by the anatomical location.
Key words: Lactobacillus spp, antioxidants, feces, duodenal content.

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
[1] Metchnikoff E. 1908. The prolongation of life; optimistic stu dies. Editorial Putnams Sons. New York/Londres. Páginas.
[2] Castro, L. A.; De Rovetto, C.. Probióticos: Utilidad Clínica. Colombia Med 2006; 37 (4):308-314.
[3] Tournut J,. Perspective de Developpement des Probiotiques Á Base e Bactéries Lactiques: Bactéries lactiques. Fondamentaux et Technologiques 1994; 2:471-488. Francia.
[4] Wu G, Chen J, Hoffmann C, Bittinger K, Chen Y, Keilbaugh S. Linking long-term dietary patterns with gut microbial enterotypes. Science 2011; 334:105-8.
[5] Benno Y, Nakao H, Uchida K, Mitsuoka T. 1992. Impact of the advances in age on the gastrointestinal microflora of beagle dogs. J Vet Med Sci 1992; 54(4):703-6.
[6] Yatsunenko, T; Rey F; Manary, M; Trehan, I; Dominguez-Bello, M; Contreras, M. 2012. Human gut microbiome viewed across age and geography. Nature. Nature Publishing Group, a division of Macmillan. Publishers Limited. All Rights Reserved 2012; 486: 222-7.
[7] Guarner F, Khan A. Garisch J, Eliakim R, Gangl A, Thomson A, Krabshuis J, Lemair T. 2011. Guía Práctica de la Organización Mundial de Gastroenterología: Probióticos y prebióticos. http://www.worldgastroenterology.org/UserFiles/file/guidelines/probiotics-spanish-2011.pdf
[8] Duwat, P.. Stress responses pathways in Lactococcus lactis. Recent Res devel Microbiol 1999; 3:335-348.
[9] Bengmark S. y. Gil Á. Control bioecológico y nutricional de la enfermedad: prebióticos, probióticos y simbióticos. Nutr. Hosp. 2006; 21:(2)73-86.
[10] Yeimy Alejandra Rodríguez R, Andrés Felipe Rojas G, Sneyder Rodríguez B. Encapsulación de probióticos para aplicaciones alimenticias. Revista Biosalud 2016; 15(2): 106-115.
[11] Tang W, Xing Z, Li C, Wang J, Wang Y. 2017. Molecular mechanisms and in vitro antioxidant effects of Lactobacillus plantarum MA2. Food Chem. 2017 15;221:1642-1649. doi: 10.1016/j.foodchem.2016.10.124. Epub 2016 Oct 27.
[12] Wallin B, Rosengren B, Shertzer H, Camejo G. Lipoprotein oxidation and measurement of thiobarbituric acid reacting substances formation in a single microtiter plate: its use for evaluation of antioxidants. Anal Biochem 1993; 208: 10-15.
[13] Ohkawa H, Ohishi N, Yagi K.. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal Biochem 1979; 95: 351-358.
[14] Dellaglio, F; De Roissart, H; Torriani, S; Curk, M; Janssens, C. 1994. Caractéristiques Générales des Bactéries lactiques. En: Bactéries Lactiques. Vol. I. Lorica. 25-116 pp.
[15] Gaschen, F. 2007. Bacteria and the Canine and Feline Gut: The Good, the Bad, and the Ugly. School of Veterinary Medicine, Louisiana State University, Baton Rouge, LA, USA. NAVC Proceedings. URL :http:// www.ivis.org. (Consulta: Diciembre de 2010).
[16]Marteau, P; Vrese, CJ; Cellier; Schrezenmeir, J.. Protection from gastrointestinal diseases with the use of probiótics.. Am J Clin Nut 2001;73: 430-436.
[17] Kim, S; Owaga, Y; Adachi Y. Canine Intestinal Lactic Acid Bacteria Agglutinated with Concanavalin., J.Vet. Med. Sci. 2006; 68 (12): 1351-1354.
[18] Perelmulter K, Fraga M, Zunino P. In vitro activity of potential probiotic Lactobacillus murinus isolated from the dog. Journal of Applied Microbiology. 2008; 104(6):1718-1725.
[19] Avila, J, Avila M, Tovar B, Perazzo Y, Brizuela M, Hernadez H. Capacidad Probiótica de Cepas Del Género Lactobacillus Extraídas Del Tracto Intestinal de Animales de Granja. Revista Científica, FCV-LUZ. 2010. XX(2) 161 -169.
[20] Fabian E, Elmadfa I. The effect of daily consumption of probiotic and conventional yoghurt on oxidant and anti-oxidant parameters in plasma of young healthy women. Int J Vitam Nutr Res. 2007; 77 (2): 79-88.
[21] Gaschen, F. 2007. Bacteria and the Canine and Feline Gut: The Good, the Bad, and the Ugly. School of Veterinary Medicine, Louisiana State University, Baton Rouge, LA, USA. NAVC Proceedings. URL :http:// www.ivis.org. (Consulta: Diciembre de 2010).
[22] Saide J, Gilliland S. Antioxidative Activity of lactobacilli Measured by Oxygen Radical Adsorbance Capacity.1: J Dairy Sci 2005; 88(4):1352-7.
[23] Kullisaar, T; Songisepp E; Aunapuu, M; Kilk, K; Arend, A; Mikelsaar, M; Rehema, M; Zilmer, M. 2010. Complete glutathione system in probiotic Lactobacillus fermentum ME3. Prikladnaia biokhimiia i mikrobiologiia 2010;46(5):527-531.
[24] Tang W, Xing Z, Hu H, Li C, Wang J, Wang Y. 2016. Antioxidative effects in vivo and colonization of Lactobacillus plantarum MA2 in the murine intestinal tract. Apply Microbial Biotechnology. 2016;100(16):7193-202.
[25] Yoon Yung H; Byun Jung R. 2004. Occurrence of Glutathione Sulphydryl (GSH) and Antioxidant Activities in Probiotic Lactobacillus spp. Asian-Aust. J. Anim. Sci. 2004; 17(11):1582-1585.
[26] Peran L, Sierra S, Comalada M, Lara-Villoslada F, Bailón E, Nieto A, Concha A, Olivares M, Zarzuelo A, Xaus J, Gálvez J. A comparative study of the preventative effects exerted by two probiotics, Lactobacillus reuteri and Lactobacillus fermentum, in the trinitrobenzenesulfonic acid model of rat colitis.Br J Nutr. 2007;97(1):96-103.


 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

** Back-end Alejandría BE 7.3.0b3 *